羊痘病毒(GaPV)核酸檢測試劑（熒光PCR法，外源內標）
包裝規格：48 T/盒
產品說明：
采用Taqman探針技術，以羊痘病毒(GaPV，羊痘病毒屬包含綿羊痘病毒、山羊痘病毒和牛結節性皮膚病病毒等3種病毒)的特異性保守基因為靶位點設計特異性引物和探針，用于樣品中GaPV核酸的輔助檢測。本產品引入了dUTP / UDG 系統，可降解含U的ssDNA和dsDNA，消除由PCR產物導致的交叉污染。 同時設置陽性內對照 (即內標，使用VIC報告基團)，通過檢測內標是否正常來監測qPCR體系中是否含有 PCR抑制物，避免出現假陰性結果。
產品組成：
組分名稱 | 主要成分 | DV231Y-21-V1 | |
1 | GaPV PreMix-2 | qPCR反應緩沖液、dNTPs、UDG酶、Taq酶、引物、探針等 | 960 μL/管 |
2 | GaPV陰性對照-2 | 無酶水 | 400 μL/管 |
3 | GaPV內標對照-2 | 含內標擴增片段的核酸 | 480 μL/管 |
4 | GaPV陽性對照-2 | 含目標擴增片段的核酸 | 50 μL/管 |
注：不同批號產品的成分之間不可以混用或互換！！！
儲存條件和保質期：
在-20±5℃避光儲存，有效期12月。干冰運輸。重復凍融小于5次。生產日期，失效日期請見外包裝盒。
適用儀器：
ABI7500、宏石96P、Bio-Rad CFX96實時熒光PCR儀等。
樣品要求：
1、適用樣品類型
活體或剖檢牛羊的皮膚丘疹、肺部病變組織、淋巴結、血液等樣品。
要求送檢新鮮樣品，禁止反復凍融！
2、樣品處理（核酸提取區）
參照《NY/T 541-2016 獸醫診斷樣品采集、保存與運輸技術規范》等標準進行樣品前處理， 使用商業化的提取試劑盒提取樣品中的核酸。提取時，每200 μL陰性對照和處理后的樣品溶液中添加10 μL內標對照，提取后的核酸應立即檢測，否則凍存于-20±5℃，保存時間不超過6個月，禁止反復凍融！
*內標對照的其它使用方法：將內標對照混入 qPCR工作液中，但僅僅質控擴增過程和監測qPCR體系中是否含有 PCR抑制物，不能質控提取核酸過程。
檢測方法
為了防止污染，實驗需分區操作！！！
注：核酸提取參照樣品要求，在核酸提取區進行或在樣品處理區進行。
1、試劑準備 (在試劑準備區進行)
(1) 推薦方式（內標對照質控核酸提取和核酸擴增過程）
取出試劑盒中的各組分以及自備試劑，室溫放置，待溫度平衡至室溫，混勻后備用；
根據檢測樣品數量，建議每次檢測均設置陰性對照和陽性對照。將所需數量（N）的GaPV PreMix-2分配到每個微離心管（如八連管）中，20 μL/管。待檢樣品數為n時，所需反應數N=樣品數(n)+陽性對照(1)+陰性對照(1)；
當準備使用時，再轉移到樣品處理區。
(2) 其它方式（內標對照僅質控核酸擴增過程）
根據所檢測的樣品數量按照下表配制反應液，建議每次檢測均設置陰性對照和陽性對照。待檢樣品數為n時， 需配制反應體系數N=待檢樣品數(n) +陽性對照(1)+陰性對照(1)+1。
*qPCR工作液配制表（其它方式）
組份 | 每反應體積(μL) |
GaPV PreMix-2 | 20 μL×N |
GaPV內標對照-2 | 0.5 μL×N |
*注：本配制方法為在提取樣品核酸未加內標對照時的補救方法，不推薦。
將配制好的qPCR工作液充分混勻后瞬時離心，待用；當準備使用時，將等量的20 μL分配到每個微離心管（如八連管）中，并轉移到樣品處理區。
2、樣品加樣 (在樣品處理區進行)
在每個PCR管中加入5 μL經提取的待測樣品和陰性對照、陽性對照，蓋上管蓋， 瞬時離心，使液體全部沉于管底。
3、qPCR擴增 (在擴增與分析區進行)
(1) 熒光通道選擇
熒光基團選擇FAM通道檢測GaPV；選擇VIC 通道檢測內標；淬滅基團設置為none。如ABI qPCR儀，還需設置Passive Reference為none。其它儀器參考儀器說明書。
(2) qPCR擴增程序設置
設置反應體系為25 μL。
步驟 | 溫度 | 反應時間 | 循環 | |
UDG消化 | 50℃ | 5 min | 1 | |
預變性 | 95℃ | 30 sec | 1 | |
擴增 | 變性 | 95℃ | 5 sec | 45 |
退火與延伸 | 60℃ | 35 sec，數據收集 | ||
4、結果分析 (以ABI7500 qPCR儀為例)
反應結束后，qPCR儀將自動生成結果。若儀器自動生成的擴增曲線或閾值線有異常，用戶可根據實際情況自行調整，基線Start值可以在 3~10，基線End值可設在 5~20，調整各擴增曲線的基線區相對水平即可。點擊Analyze 進行分析。
5、質量控制
試劑盒中各控制項應符合下列要求，否則實驗無效。
陽性對照 | 陰性對照 | |
FAM通道（GaPV） | Ct≦32 | 無Ct值或Ct>40 |
VIC通道 （內標） | 無Ct值或Ct>40 | 典型的S形曲線，Ct≦35 |
參考qPCR工作液配制表（其它方式）配制時，陽性對照的VIC通道應均出現S型曲線，Ct值≦35。
檢驗結果的解釋
（1）若樣品的VIC通道呈典型的S形曲線且Ct≦35時，
A. 當FAM通道Ct≦35，判定為GaPV陽性；
B. 當FAM通道Ct值在35到40之間時，需要觀察靶基因的擴增曲線是否呈S形，如果曲線呈S形，樣品應視為疑似GaPV陽性，需重新檢測；復測結果若Ct值≦40且具有典型S形曲線，判定為GaPV陽性；反之若為無Ct顯示、Ct>40或無典型S形曲線，則判定為GaPV陰性。
C. 當FAM通道Ct>40，判定為GaPV陰性。
（2）如果VIC通道的Ct值高于35，而沒有顯示明顯的S形擴增曲線，原因如下：
1) 樣品中存在PCR抑制劑，建議實驗前稀釋模板。
2) 核酸提取操作存在缺陷，建議重復核酸提取進行檢測。
3) 在處理過程中沒有獲得合格的樣品，或者在運輸和儲存過程中樣品已經降解，建議重新采樣。
檢驗方法的局限性
1) 陰性結果可能是由于從樣品中提取的核酸質量低，儲存條件不當，儲存期不合適，樣品中存在抑制劑，核酸降解和核酸提取方法的提取效率差等原因。
2) 不合理的樣品采集、運送與保存條件，樣品中病毒含量過低，或不合理的實驗操作和環境很可能造成假陰性或假陽性結果。其它臨床觀察和相關資料應結合測定，必要時再次進行檢測。
3) 由于突變或其它原因，靶序列的序列變化可能會產生假陰性結果。
注意事項：
1) 本產品僅用于科研使用，使用前請仔細閱讀本說明書。
2) 實驗前請熟悉和掌握需使用的各種儀器的操作方法和注意事項，對每次實驗進行質量控制。
3) 實驗室管理需嚴格遵照PCR基因擴增實驗室的管理規范，實驗人員必須進行專業培訓，實驗過程嚴格分區進行， 所有消耗品僅作一次性使用，實驗操作的每個階段使用專用儀器和設備，各區各階段用品不可交叉使用。
4) 所有檢測樣品均視為具有傳染性的物質，實驗過程中穿工作服并經常更換手套，以避免樣品間的交叉污染；
5) 樣品操作、廢棄物處理應符合相關法規要求：《微生物生物醫學實驗室生物安全通用準則》和《醫療廢物管理 條例》。
6) 所有試劑 (包括本產品中的組分與客戶自備試劑) 使用前均需徹底化凍、混勻。
7) 血液類樣品溶血嚴重時，會使擴增曲線高度顯著下降。因此，當使用該試劑盒同時檢測血液樣品原液和生理鹽水稀釋 樣品時，建議對2類模板分別設置不同的閾值線，以保證結果的準確性。
8) 當出現多個樣品的Ct值>40時，可能是qPCR儀自動生成的閾值線較高的原因，建議將閾值線高度設置在擴增曲線 最大熒光值的1/15左右后，重新分析。
本產品僅供科研使用，檢測結果不能用作臨床診斷判斷唯一依據
從2011年開始我們致力于在生命科學領域、生物醫學實驗技術及論文潤色服務，協助客戶各類實驗服務及論文潤色十多年，是您值得信賴的科研合作伙伴!
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實驗技術服務：
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